MATURITA’ SCIENTIFICA: Maturità Scientifica conseguita nel 1990 presso il Liceo E. Majorana di Moncalieri (TO) 

LAUREA IN SCIENZE BIOLOGICHE Indirizzo Fisiopatologico. Conseguita a pieni voti, ottenuta presso l'Università di Torino nella sessione estiva dell'anno 1997

ABILITAZIONE PROFESSIONALE: Conseguita con Esame di Stato nella sessione estiva del 1999; iscrizione all'Albo Professionale dei Biologi della Provincia di Torino nell'anno 2003 (n. 053471)

SPECIALIZZAZIONI:

Titolo di Dottore di Ricerca in Oncologia Umana conseguito nel Gennaio 2001

Esperienze professionali:

1995: Allieva interna presso il Laboratorio di Citogenetica e Genetica Medica diretto dalla Prof. I. Malheiro presso l’Università degli Studi di Porto (Portogallo) nell’ambito del progetto Erasmus, con un progetto riguardante lo studio dell’Anemia di Fanconi.

1997: Allieva interna presso il Laboratorio di Scienze Biomediche ed Oncologia Sperimentale diretto dal dott. Gianluca Gaidano presso l’ospedale San Luigi Gonzaga di Orbassano (TO).

Tirocinio annuale tecnico-pratico per l’abilitazione professionale presso il Laboratorio di Oncologia Clinica dell’ospedale Molinette, diretto dal Prof. M. Aglietta, lavorando ad un progetto di ricerca su “Espansione di cellule staminali”.

1999-2003: Attività di ricerca con progetti riguardanti lo studio dei marcatori molecolari e l’identificazione di cellule neoplastiche contaminanti le raccolte staminali nel carcinoma mammario e lo studio del recettore CXCR4 nell’osteosarcoma presso il Laboratorio di Oncologia Clinica presso l’IRCC Candiolo (Università degli Studi di Torino) diretto dal Prof. M. Aglietta con un progetto di ricerca dal titolo “e studio del ruolo potenziale nella recidiva di malattia nel carcinoma mammario ”.

Settembre 2003: Inizio dell’attività di Libera Professione nell’ambito della Biologia della Riproduzione, presso il centro di Fecondazione Assistita A.R.T.E.S. S.R.L. diretto dal Dr. Alessandro Di Gregorio, da cui acquisisce competenze relative alle tecniche di fecondazione “in vitro” ed Embriologia clinica.

Gennaio – Febbraio 2004: Tirocinio tecnico-pratico presso il Laboratorio di Fecondazione in Vitro dell’Ospedale Tel Hashomer di Tel Aviv (Israele), diretto dal Prof. Jehoshua Dor.

Esperienza tecnica:

Tecniche di Procreazione Assistita

Selezione e recupero di spermatozoi: “Swim up da strato”; “Swim up da pellet”; “Centrifugazione su gradiente di Percoll”.

Esperienza in Embriologia Clinica relative a: prelievo e maturazione di ovociti, colture embrionali umane.

Tecniche di Inseminazione Artificiale: Inseminazione Intrauterina e Pericervicale.

Tecniche di Fecondazione in vitro e trasferimento degli embrioni, FIVET.

Fecondazione Assistita Meccanicamente: Conoscenza delle tecniche di Micromanipolazione di ovociti ed Iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi (ICSI).

Seminologia: Analisi del Liquido Seminale. Caratteristiche Fisiche del Seme. Valutazione del preparato fresco e relative colorazioni. Aspetti qualitativi degli spermatozoi: Motilità, Morfologia e Vitalità nemaspermica.

Crioconservazione di gameti: liquido seminale ed ovociti.

Crioconservazione di embrioni.

Scongelamento di gameti ed embrioni.

Tecniche di Biologia Cellulare

Frazionamento e purificazione di sottopopolazioni e di progenitori emopoietici da midollo osseo, sangue periferico e sangue cordonale.

Colture in vitro di cellule emopoietiche in terreno liquido e semisolido e allestimento di colture stromali.

Colture di linee cellulari a breve e lungo termine.

Criopreservazione di cellule.

Preparazione di campioni cellulari per analisi citofluorimetrica.

Analisi citofluorimetrica tramite FACS.

Valutazione in immunofluorescenza indiretta delle colonie megacariocitarie tramite microscopio a fluorescenza.

Analisi del cariotipo: preparazione di cromosomi e tecniche di bandeggio.

Test di migrazione cellulare mediante utilizzo di “transwell”.

Test di adesione cellulare mediante utilizzo di coloranti fluorescenti (calceina-AM)

Analisi della proliferazione cellulare mediante 3H-timidina e saggio con MTT.

Tecniche di Biologia Molecolare

Estrazione e purificazione di RNA totale per analisi in RT-PCR.

Estrazione e purificazione di DNA genomico per analisi in PCR.

Amplificazione genica in vitro mediante PCR, RT-PCR e inverse PCR.

Amplificazione in vitro mediante Real Time Quantitative PCR.

Analisi di proteine: estrazione, immunoprecipitazione, Western blot.

Analisi dell’attività metallo-proteinasica tramite saggio zimografico.

Perissinotto E, Cavalloni G, Leone F, Fonsato V, Mitola S, Grignani G, Surrenti N, Bussolino F, Piacibello W, Aglietta M. Involvement of CXCR4/SDF-1 system during osteosarcoma tumor progression. Submitted to Clinical Cancer Research.

Bruno S, Gunetti M, Gammaitoni L, Perissinotto E, Caione L, Sanavio F, Fagioli F, Aglietta M, Piacibello W. Fast but durable megakaryocyte repopulation and platelet production in NOD/SCID mice transplanted with ex-vivo expanded human cord blood CD34+ cells. Stem Cells. 2004;22(2):135-43.

Leone F, Perissinotto E, Cavalloni G, Fonsato V, Bruno S, Surrenti N, Hong D, Capaldi A, Geuna M, Piacibello W, Aglietta M. Expression of the c-ErbB-2/HER2 proto-oncogene in normal hematopoietic cells. J Leukoc Biol. 2003 Oct;74(4):593-601.

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Piacibello W, Sanavio F, Severino A, Dane A, Gammaitoni L, Fagioli F, Perissinotto E, Cavalloni G, Kollet O, Lapidot T, Aglietta M.

Engraftment in nonobese diabetic severe combined immunodeficient mice of human CD34(+) cord blood cells after ex vivo expansion: evidence for the amplification and self-renewal of repopulating stem cells. Blood. 1999 Jun 1;93(11):3736-49.

Gaidano G, Volpe G, Pastore C, Chiarle R, Capello D, Gloghini A, Perissinotto E, Savinelli F, Bosco M, Mazza U, Pileri S, Palestro G, Carbone A, Saglio G. Detection of BCL-6 rearrangements and p53 mutations in Malt-lymphomas. Am J Hematol. 1997 Dec;56(4):206-13.